1. Lớp đào tạo GPB thận tháng 5, 2011, TP. HCM
Phần 1 Phương pháp lấy mẫu và xử lý các mẫu sinh thiết thận tại Úc
Moira J Finlay,
BS Giải Phẫu Bệnh Thận,
Bệnh Viện Hoàng gia Melbourne

2. Bài này gồm 4 phần: Những vấn đề lâm sàng chính gồm:
Chỉ định sinh thiết thận (RBx)
Các hội chứng lâm sàng liên quan
Thu thập mẫu
Biến chứng sinh thiết thận và chống chỉ định
Xử lý các mẫu sinh thiết thận thường và thận ghép tại khoa Giải Phẫu bệnh, bệnh viện Hoàng gia Melbourne, Victoria, Úc.
Tóm tắt những vấn đề chính ở thận bình thường
Sự phát triển
Giải phẫu và chức năng
Mô học và siêu cấu trúc
Vi thể bệnh thận thường

3. Lâm sàng
Bài viết này dành cho các bác sĩ quan tâm đến giải phẫu bệnh thận, không phải một hướng dẫn cho người nào muốn thực hiện sinh thiết thận hoặc theo dõi bệnh nhân sau sinh thiết.
Tại bệnh viện Hoàng Gia Melbourne, bệnh thận thường và thận ghép được quan tâm bởi các chuyên gia sau:
Bác sĩ thận học hội chẩn hoặc hội đồng Thận hội chẩn
Bác sĩ hình ảnh học chuyên về thận tham vấn
( đặc biệt nếu cần CT scan để định vị thận)
Bác sĩ ngoại khoa tham vấn (tại thời điển ghép thận hoặc trong quá trình thám sát hoặc xem xét)
Mỗi bệnh viện có kỹ thuật và cách tiến hành khác nhau
Bài viết này không đề cập đến sinh thiết thận trong u thận

4. Chỉ định sinh thiết thận thường:
Tiểu máu
Tiểu đạm
Tiểu máu và tiểu đạm
Suy thận cấp
Suy thận mạn
Tổn thương thận trong bệnh hệ thống
Theo dõi đáp ứng điều trị và diễn tiến bệnh

5. Vai trò của sinh thiết thận:
Chẩn đoán
Tiên lượng
Điều trị
Theo dõi đáp ứng điều trị và diễn tiến bệnh
Nghiên cứu khoa học

6. Chỉ định trong sinh thiết thận ghép :
Trì hõan chức năng thận ghép (DGF)
Suy chức năng ghép
Theo dõi đáp ứng điều trị
Chẩn đóan tiểu máu và tiểu đạm
Theo Protocol (của khoa, nghiên cứu, thử nghiệm lâm sàng)

7. Các hội chứng lâm sàng bệnh thận:
Tiểu protein
Tiểu máu
Hội chứng thận hư
Hội chứng viêm thận
Suy thận cấp
Suy thận mạn

8. Sinh hóa và cặn lắng nước tiểu bình thường: (theo tiêu chuẩn của phòng xét nghiệm tại RMH)
Protein niệu: <0.15g/24h
Creatinine niệu (Cr) : mmol/24h
Tỷ lệ Protein/Cr (Pr/Cr) : mg/mmol Cr
Hồng cầu (RBC): <13x106/L
Bạch cầu (WBC): <2x106/L
Trụ niệu : <100x103/L (chủ yếu protein Tamm-Horsfall)

9. Tiểu máu: Tiểu máu có ý nghĩa nếu >8000 HC/mL. Tiểu máu có thể
Đại thể hoặc vi thể
Do cầu thận hoặc không do cầu thận ( phân biệt qua quan sát KHV đối pha)
Tiểu máu không do cầu thận sẽ được bác sĩ ngoại niệu xem xét tuy nhiên có thể gặp trong một vài trường hợp viêm cầu thận

10. Hội chứng thận hư: Tiểu protein nhiều, thường >3.5g/24 giờ
Giảm Albumin/ huyết thanh (normal 35-50g/L)
Phù toàn thân
Thường kèm tăng cholesterol máu (BT <4mmol/L)

11. Hội chứng viêm thận : Tiểu máu Đôi khi có tiểu protein
Giảm độ lọc cầu thận (GFR)
Créatinine HT Bình thường mmol/L ,05 – 0,11mmol/L ,8 – 1,2mg/dL
urea BT 2,5 – 8,3mmol/L
eGFR >60mL/min/1.73m2
Hay kèm tăng huyết áp

12. Suy thận cấp (ARF): Đột ngột Tăng ure máu
Créatinine HT BT mmol/L mmol/L mg/dL
Ure máu BT mmol/L
GFR >60mL/min/1.73m2
Vô niệu < 400mL nước tiểu /24h

13. Suy thận mạn (CRF): Tăng ure máu chậm. Có thể có đợt cấp
BT Cr mmol/L mmol/L mg/dL
BT ure mmol/L
GFR >60ml/min/1.73m2
Có thể có đợt cấp

14. Kỹ thuật sinh thiết thận:
Kiểm tra máu đông
INR BT
APTT BT seconds
Der. Fib BT g/L
Xác định vị trí thận (SA, soi, CT)
Xác định độ sâu
Sát trùng da và gây tê
Lấy mẫu; dùng kim 14 gauge (kim 18 gauge thường không đủ mẫu

15. Xác định vị trí thận bằng siêu âm.

16. Hình ảnh siêu âm thận.

17. Bộ dụng cụ vô trùng trong sinh thiết thận kèm
kính phân lập mô ở phía sau

18. Bề mặt da vùng được đánh dấu và rạch da bằng dao mổ.

19. Gây tê tại chỗ và sâu đến vỏ bao thận.

20. Dùng kim Tru Cut số 14 để lấy mẫu, hoặc có thể dùng “súng” với bộ phận nảy cò tự động kèm siêu âm để định vị đường đi của kim khi sinh thiết

21. Kim Tru- cut đi hết theo chiều sâu của thận

22. Chuyển mẫu sinh thiết sang BS GPB bằng cách đặt mẫu thận trên giấy lọc thấm trong nước cất vô trùng để quan sát

23. Renal biopsy contraindications:
Đè ép vị trí sinh thiết sau khi thực hiện thủ thuật và bn được đưa về khoa để theo dõi

24. Biến chứng sinh thiết thận:
Đau
Chảy máu
Dò động tĩnh mạch
Xuyên thủng vào tạng khác
Tử vong (<0.1%)

25. Tiểu máu sau sinh thiết thận:
Thường gặp
Thường tiểu máu vi thể
<1% trường hợp cần rửa bàng quang để lấy máu cục

26. Chảy máu sau sinh thiết thận
Khối máu tụ quanh thận 85% trường hợp phát hiện bằng SA/CT
Thường tự giới hạn
Nếu chảy máu nhiều thường thấy sau 6 giờ sinh thiết
2% cần truyền máu
0.06% cần phẫu thuật cắt bỏ thận đã sinh thiết

27. Chống chỉ định sinh thiết thận:
Tăng huyết áp nặng chưa kiểm soát
Cơ địa dễ xuất huyết
Nhiễm trùng
Một số chỉ định tương đối
Một thận
Bệnh nang thận
Thận ứ nước

28. Xử lý mẫu sinh thiết tại RMH:
Hẫu hết sinh thiết được 1 mẫu dài mm
Có khi cần đâm kim 2 lần vào thận để lấy mẫu bằng kim14 gauge đế có thể đủ mẫu khảo sát; dùng kim 18 gauge có thể không lấy đủ mẫu khảo sát bệnh thận thường hoặc thận ghép
Cần khảo sát vùng vỏ thận, trong cả bệnh thận thường hoặc thận ghép
Vùng tủy thận cũng hữu ích trong thận ghép
Tại RMH, một người Medical Laboratory Scientist đã được huấn luyện tốt sẽ tiến hành STT ( ngọai trừ STT có thể do BS ngọai khoa tiến hành, như trong trường hợp tái tưới máu sau ghép thận), Quan sát mẫu thận dưới KHV phân lập mô, và cất mẫu thận thành nhiêu phẩn dùng khảo sát
Kính hiển vi quang học
Hóa mô miễn dịch
Kính hiển vi điện tử
Các khảo sát khác
Thu thập số liệu

29. Minimum Requirement
Doctor Details
Name, Contact no. (phone, pager)
Minimum Requirement
Bradma label (Inpatients)
Full patient details (Outpatients)
IIIIIIIIIIIIIIIIIIIIIIIIIIIIIII
SMITH
JOHN
5 PARK ST M/M/ENG
MELBOURNE PUB
Ph: MH:
Printed:
MC – PN:
Minimum Requirement
Hosp.
Ward and Unit
Minimum Requirement
Doctor Signature
Request Date
Minimum Requirement
Collector Signature
Collect Date and Time
Bảng yêu cầu trong sinh thiết thận.theo yêu cầu của NATA. Dữ kiện lâm sàng là quan trọng. Nếu mẫu sinh thiết thận khẩn cấp, BS Thận học hội chẩn sẽ bàn luận ca lâm sàng với BS GPB thận

30. Kính phân lập mô tại khoa chẩn đoán hình ảnh

31. Formalin trung tính có đệm
Glutaraldehyde
Đĩa Petri
Que thao tác mô
Giấy lọc thấm nước cất
Đĩa Petri
Dao để tách mô
Dụng cụ và chất cố định mẫu thận.

32. Đặt mẫu sinh thiết trên giấy lọc thấm nước cất vô trùng

33. Khi tiếp nhận mẫu sinh thiết:
Mô tả đại thể
Chọn ít nhất 5 mm vùng vỏ thận hoặc hơn, cố định trong formol đệm trung tính (có thể dùng dung dịch cố định thủy ngân như Dubos-Brazil vì sẽ quan sát chất lắng đọng và nhân rõ hơn nhưng vì tính độc hại của dung dịch này và vì an toàn sức khỏe nghề nghiệp từ lâu đã không còn được sử dụng)
Nếu không đủ vùng vỏ, lấy 1mm3 vùng vỏ với ít nhất 1 cầu thận cố định trong cacodylate glutaraldehyde đệm để vùi trong plastic trong trường hợp quan sát dưới kính hiển vi điện tử.
Cố định phần còn lại cho nhuộm miễn dịch huỳnh quang và các khảo sát khác, nếu cần
Cố định phần còn lại của vỏ hoặc tủy thận trong formol

34. Mẫu sinh thiết dứơi KHV phân lập mô.
Vỏ bao thận Mỡ
Vỏ thận
Mẫu sinh thiết dứơi KHV phân lập mô.

35. Mẫu sinh thiết ở độ phóng đại lớn hơn.
Cầu thận
Mẫu sinh thiết ở độ phóng đại lớn hơn.

36. Mô được chia ra và cố định trong dung dich hoặc môi trường vận chuyển thích hợp

37. Trong phòng xét nghiệm:
Xử lý mô đã cố định bằng formol, vùi trong paraffin
Cắt mỏng
Dày 0.5m đối với nhuộm H&E và nhuộm đặc biệt
Dày 2m để nhuộm đỏ Congo and hóa mô
Các mẫu cắt được nhuộm, dán lamen và gửi đến BS GPB

38. Mẫu sinh thiết vùi nến.

39. Hóa mô miễn dịch:
Chúng tôi thường dùng miễn dịch men peroxidase (IP) trên mẫu vùi paraffin vì màu sắc sẽ không phai giúp lưu trữ một thời gian dài
Một số phòng xét nghiêm lại dùng alkaline phosphatase trên mẫu vùi nến vì thuốc nhuộm ít độc hại.
Một số phòng xét nghiệm sử dụng nhuộm miễn dịch huỳnh quang (IF) vì rất nhạy nhưng cần chụp hình để ghi hình kết quả, vì màu hùynh quang không giữ lâu được
Chúng tôi nhuộm miễn dịch hùynh quang trong trường hợp khẩn cấp (trong vòng 1 giờ khi lấy mẫu) hoặc bệnh Goodpasture.

40. Phương pháp miễn dịch men peroxidase:
Cắt mỏng 2m, nhuộm H&E và nhuộm đặc biệt
Nhiều loại kháng thể khác nhau dùng trong thận thường và thận ghép
Nhuộm bằng phương pháp peroxidase-antiperoxidase bằng máy nhuộm miễn dịch tự động (chúng tôi dùng máy Vision Biosystems Bond-Max Automated Immunostainer)
Phủ lamen và xem dưới kính hiển vi quang học

41. Phương pháp nhuộm huỳnh quang:
Mẫu sinh thiết 5 mm vùng vỏ
Dùng mô thận tươi hoặc mô thận lấy được trong 15 phút trước khi đến labo GPB
Hoặc để lạnh trong dung dịch phosphate buffered saline (PBS), đem tới phòng xét nghiệm trong vài giờ
Hoặc đặt trong 1 môi trường vận chuyển thích hợp, như Michel’s medium và vận chuyển như bình thường; kháng nguyên sẽ bảo tồn và có thể tiến hành nhuộm trong vài ngày hay vài tuần sau khi lấy mẫu.
Tại phòng xét nghiệm
Mẫu mô sẽ được động lạnh và cắt mỏng
Dùng kháng thể IgA, IgG, IgM, fibrin, C3, C1q
Ủ trong 30 phút, rửa sạch và dán lamen
Khảo sát dưới kính hiển vi huỳnh quang

42. Cắt mỏng và nhuộm tại RMH:
Thận thường – cắt liên tục 24 mẫu
Nhuộm H&E x5 (S4, 10, 16, 20, 24)
OVG x1 (S19)
PAS x2 (S8, 14)
Masson x1 (S21)
AgMT x2 (S15, 23)
Lưu trữ
Thận ghép – cắt liên tục 12 mẫu
Nhuộm H&E x4 (S3, 6, 9, 12)
OVG x1 (S7)
PAS x2 (S4, 8)
Masson x1 (S11)
AgMT x2 (S5, 10)
Lưu trữ

43. Nhuộm hóa mô miễn dịch: Thận ghép Thận thường IgA IgA IgG IgG IgM IgM
fibrin(ogen) C3
C1q
Thận ghép
IgA
IgG
IgM
fibrin(ogen) C3
C1q
C4d
BKV/SV40

44. Khay đựng các lame nhuộm H&E, nhuộm đặc biệt và nhuộm miễn dịch men peroxidase

45. Kính hiển vi điện tử:
Chọn một mẫu vỏ thận khoảng 1mm chứa ít nhất một cầu thận và cố định trong glutaraldehyde
Xử lý mô và vùi trong chất plastic hoặc resin
Cắt mỏng với dao thủy tinh
Nhuộm bằng toluidine blue hoặc phẩm nhuộm tương tự
Xem dưới kính hiển vi quang học để xác định cầu thận
Block bệnh phẩm được tỉa đến “mesa”, và lát cắt siêu mỏng sẽ nhuộm trong chì citrate và uranium acetate
Lát cắt siêu mỏng sẽ xem và chụp hình dưới kính hiển vi điện tử
Mẫu mô có thể xả nến và xử lý lại, siêu cấu trúc sẽ khó quan sát hơn nếu xử lý mô thường quy nhưng có thể quan sát amyloid & chất lắng đọng và đo bề dày màng đáy dày

46. Lát cắt mỏng vùi trong chất plastic.

47. Xanh Toluidine x2
Xanh Toluidine x10
Lát cắt mỏng vùi trong chất plastic Một hoặc hai cầu thận được chọn để quan sát dưới kính hiển vi điện tử
Xanh Toluidine x40

48. Tóm tắt : Sự phát triển của thận Giải phẫu và chức năng thận
Mô học và siêu cấu trúc thận

49. Sự phát triển của hệ tiết niệu:
Cấu trúc
Phôi thai
Thành phần
Phát triển
Tiền thận
(pronephros)
3 tuần
Một chuỗi các ống thận đơn giản
Nhập chung thành ống cận trung thận
Trung thận
(Mesonephros)
3- tối đa 5 tuần
Nhiều ống thận phức tạp
Đoạn ÔT gần hình thành cầu thận;
Đoạn ÔT xa hình thành ống cận trung thận
Hậu thận
(metanephros)
Từ 5 tuần
Nguyên mô thận
(nephrogenic blastema)
Tạo nhánh trên nụ niệu quản hình thành thận hoàn chỉnh
Nụ niệu quản
(ureteral bud)
Xuất hiện tuần 4; ở vùng chậu xuất hiện tuần 7
ống thận tạo nhánh
Kích thích tạo thận và hình thành ống góp trưởng thành

50. sprojects.mmi.mcgill.ca

51. from Gray’s Anatomy

52. Thận bình thường

53. Sơ đồ vùng vỏ, vùng tủy với các đài thận bình thường
Robins & Cotran
Sơ đồ vùng vỏ, vùng tủy với các đài thận bình thường

54. Nephron: Đơn vị thận Đơn vị cấu trúc và chức năng của thận
Thận người có khoảng 1 triệu nephrons
Mỗi nephon bao gồm
Cầu thận
ống lượn gần
Quai Henle
ống lượn xa
Phức hợp cận cầu thận

55. diagram of a nephron from Gray’s Anatomy 1929

56. Cầu thận: Đơn vị lọc Búi mạch máu Máu đến từ Động mạch đến
Được vùng gian mô nâng đỡ
Có bao Bowman bao quanh
Máu đến từ Động mạch đến
Máu ra từ Động mạch đi
Thành mao mạch gồm
Khỏang cửa sổ của tế bào nội mô
Màng đáy cầu thận ( nm thick)
Tế bào chân giả (podocyte)

57. Ống thận: ống thận gần ống thận xa Màng đáy bao bên ngoài Lòng ống nhỏ
Bờ bàn chải
Tế bào biểu mô trụ cao
Bào tương chứa hạt ưa eosinophile (ty thể )
ống thận xa
Lòng ống lớn
Không có bờ bàn chải
Tế bào biểu mô vuông đơn
Bào tương nhạt

58. Ep L
L: lòng mạch máu
En: nhân bào nội mô
Ep: nhân tế bào biểu mô
M: nhân tế bào gian mô
R: hồng cầu
U: khoang niệu M L R U M Ep En L R

59. Chức năng thận: Bài tiết Cân bằng kiềm –toan Điều hòa osmolality máu
Chất thải nito từ quá trình phân hủy protein
uric acid từ chuyển hóa acid nhân
Cân bằng kiềm –toan
Kết hợp với phổi
Thận kiểm soát tái hấp thu bicarbonate và bài tiết H+
Điều hòa osmolality máu
Chuyển hóa Calcium và phosphate
Điều hòa huyết áp
Hệ thống renin-angiotensin
Bài tiết hormon
erythropoeitin
renin
vitamin D activation

60. Hình thành nước tiểu: Lọc Tái hấp thu Chế tiết
Các tế bào và protein phân tử lớn trong máu được siêu lọc để không lọc qua thận
180 lít/ ngày
Tái hấp thu
Quá trình vận chuyễn ngược các phân tử đã siêu lọc qua cầu thận và hấp thu lại vào máu
Chế tiết
Vận chuyển các phân tử từ máu ra nước tiểu
Khoảng 2 lít nước tiểu/ ngày

61. Chức năng cầu thận: Khỏang cửa sổ của tế bào nội mô mạch máu
Có nhiều glycosaminoglycans như heparan sulphate tích điện tích âm
Mảng lọc có tính chọn lọc về kích thước và điện tích
Không thấm các protein có kích thước như albumin (3.6nm radius, 70kD) hoặc lớn hơn
Thấm với protein tích điện dương
Thấm cao với nước

62. Ống thận gần: Tái hấp thu từ dịch lọc của cầu thận
~67% muối và nước, cơ chế chủ động và thụ động (bơm Na/K/ATPase)
~100% đường, amino acids and phosphate vô cơ được tái hấp thu chủ động bằng kênh đồng vận chuyển
~ 65% K+ bằng dịch chuyển và khuếch tán đơn giản
~ 50% ure
~80% phosphate (↑PTH, ↓tái hấp thu)
Bài tiết một số thuốc

63. Quai Henlé: Cành xuống dầy Cành xuống mỏng Cành lên mỏng
Thấm thấp với ion và urea,
Thấm cao với nước
Cành xuống mỏng
Thấm thấp ion và urea,
Cành lên mỏng
Thấm với ion
Không thấm với nước
Cành lên dày vùng tủy
Vận chuyển chủ động Na+, K+, Cl-
Vận chuyển thụ động K+ vào lòng ống tạo điện tích màng dẫn đến tái hấp thu Na+, Mg2+, Ca2+ và cation khác
Cành lên dày vùng vỏ
Đổ vào ống góp xa

64. Ống lượn xa: Điều hòa K+, Na+, Ca2, bicarbonate & H+
Đồng vận chuyển thụ động Na+/Cl-, nhạy với thiazide
Tái hấp thu/ bài tiết chủ động bicarbonate và H+
Bài tiết K+ và tái hấp thu Na+ qua trung gian aldosterone
Tái hấp thu Ca2+kiểm soát bởi PTH
Biểu hiện thụ thể arginine vasopressin 2

65. Ống góp:
Tham gia một phần trong hệ thống đối lưu giao hội với quai Henlé
Bình thường không thấm với nước
Nồng độ ADH ảnh hưởng độ thấm của ống góp với nước để quyết định pha loãng hoặc cô đặc nước tiểu
Phần thấp của ống góp thấm với ure
Nối với tháp thận và niệu quản và bàng quang

66. Phức hợp cận tiểu cầu:
Nằm giữa tiểu động mạch đến và cành lên dày của quai Henlé
Gồm
macula densa (vết đặc)
Tế bào cận tiểu cầu
Tế bào gian mô ngoài cầu thận
Chịu trách nhiệm sản xuất renin

67. Bệnh nguyên của bệnh thận:
Do Gene
Do Môi trường
Hóa chất
Vật lý
Sinh học
Vi khuẩn
Nấm
Vi rút
Ký sinh trùng

68. Bệnh thận và hệ thống tiết niệu:
Bẩm sinh/bất thường trong quá trình phát triển
Chuyển hóa/đáp ứng sinh lý quá mức
Tuổi tác và suy thoái
Tổn thương và tái tạo
Rối loạn dịch & huyết động U
Vô căn (thận ghép)

69. Hệ thống phân loại tốt nhất phải toàn diện, dễ hiểu, và đầy đủ (Một bệnh có thể phù hợp với nhiều phân loại)

70. Phân loại thực hành trong bệnh thận:
Bẩm sinh & nang
Do cơ học
Viêm
Mạch máu
Cầu thận
ống thận (bao gồm những rối loạn chuyển hóa)
Sỏi tiết niệu U
Bệnh thận trong bệnh hệ thống
Vô căn

71. Bệnh thận thường được chẩn đoán:
Bệnh cầu thận (bao gồm bệnh hệ thống)
Bệnh ống thận
Bệnh mô kẽ- ống thận
Bệnh mạch máu

72. 5. Bệnh cầu thận – dạng thường gặp:
Bệnh cầu thận nguyên phát
Viêm cầu thận tăng sinh (sau nhiễm trùng, khác)
Viêm cầu thận tiến triển nhanh (liềm)
Bệnh cầu thận màng
Bệnh cầu thận sang thương tối thiểu
Xơ hóa cầu thận khu trú từng vùng
Viêm cầu thận màng tăng sinh
bệnh thận IgA
Viêm cầu thận mạn
Bệnh cầu thận trong bệnh lý hệ thống
Lupus đỏ hệ thống
Đái tháo đường
Amyloidosis
Hội chứng Goodpasture, viêm đa động mạch, viêm hạt Wegener
Henoch-Schonlein
Viêm nội tâm mạc do vi trùng
Rối loạn di truyền
Hội chứng Alport
Bệnh màng đáy mỏng
Bệnh Fabry

73. 5. Bệnh cầu thận – tiếp cận lâm sàng:
Tiểu protein
Viêm CT màng (GN), tổn thương biểu mô(biến đổi tối thiểu, xơ hóa CT khu trú tứng phần với hyalin hóa(FGS), viêm CT tăng sinh, viêm CT tăng sinh gian mô, bệnh hệ thống (amyloid, ĐTĐ, monoclonal immunoglobulin (Ig) bệnh lắng đọng)
Hội chứng thận hư
Với tiểu đạm, phối hợp Viêm cầu thận tăng sinh gian mô mạch máu (MCGN) và một số bệnh cầu thận liềm
Tiểu máu vi thể không triệu chứng
Bệnh thận màng đáy mỏng, bệnh thận IgA, bệnh Alport
Hội chứng viêm thận
Viêm cầu thận cấp tăng sinh lan tỏa, MCGN, viêm cầu thận tăng sinh khu trú, bệnh cầu thận liềm
Suy thận cấp
Viêm cầu thận liềm
Suy thận mạn
Viêm cầu thận màng, MCGN, tăng sinh khu trú, FGS, bệnh thận giai đoạn cuối

74. 5. Bệnh cầu thận –tiếp cận về hình thái học:
Không tăng sinh
Bệnh cầu thận màng mỏng
Sang thương tối thiểu
Viêm cầu thận màng
Tăng sinh
Khu trú
Lan tỏa
Có Liềm và / hoặc kèm hoại tử
Xơ hóa
FGS nguyên phát
Xơ hóa từng phần thứ phát
Lan rộng
Xơ hóa cầu thận do ĐTĐ
amyloid
Bệnh lắng đọng immunoglobulin đơn dòng
fibrillary/immuntactoid

75. Cơ chế miễn dịch trong bệnh cầu thận:
Qua trung gian miễn dịch dịch thể
Lắng đọng phức hợp miễn dịch
Kháng nguyên mô nội tại collagen IV trong bệnh kháng màng đáy cầu thận; Haymann trong bệnh viêm cầu thận màng; kháng nguyên gian mô; khác
Kháng nguyên bám dính lên cầu thận
Ngoại sinh như yếu tố viêm, thuốc
Nội sinh: DNA, protein nhân, Igs, phức hợp miễn dịch, IgA
Lắng đọng phức hợp miễn dịch lưu thông lên cầu thận
Nội sinh : DNA, u
Ngoại sinh: sản phẩm của tác nhân nhiễm trùng
Kháng thể độc tế bào
Tổn thương qua trung gian miễn dĩch tế bào
Kích hoạt con đường bổ thể biến đổi ( không kinh điển)

76. 9. Bệnh thận trong bệnh hệ thống:
Đái tháo đường
amyloid
Bệnh mô liên kết
Lupus đỏ hệ thống
Thấp khớp
Xơ cứng bì
Tăng huyết áp
Viêm nội tâm mạc nhiễm khuẩn
Viêm mạch máu
Viêm đa động mạch vi thể
Bệnh Wegener
Henoch Scholein
Bệnh Goodpasture

77. 10. Bệnh thận vô căn: Lọc máu Ghép thận Phẫu thuật
Cơ học (tắc nghẽn & trào ngược)
Mạch máu
Thải ghép
Độc chất từ thuốc
Nhiễm trùng
Viêm cầu thận tái phát hoặc mới mắc
U – Tăng sinh lympho bào sau ghép, da (carcinom tế bào gai, melanom), cổ tử cung
Sau lọc máu
Thuốc
Độc chất
Tác dụng phụ của thuốc dùng trong điều trị bệnh thận

78. Lời cảm ơn
Dr A J Landgren, Chairman, and Staff of the Anatomical Pathology Department, Royal Melbourne Hospital, particularly Frank Feleppa and Rosa Agostino for technical work
Professor G Becker and Staff of the Department of Nephrology, Royal Melbourne Hospital
Staff of the Electron Microscopy Unit at Melbourne University, particularly Anna Friedhuber, for technical work
Professor Priscilla Kincaid Smith & Professor John Dowling, former pathologists at the Royal Melbourne Hospital